室長 山中　修一郎
主な研究テーマ
① 末期腎不全の新規治療法開発を目的とした、ヒトiPS細胞と異種動物の胎仔腎臓を用いた移植可能な腎臓と移植手法の開発
② キメラ個体およびキメラオルガノイドを用いた薬剤性腎障害の病態解析と新規治療探索
③ 標的細胞誘導死マウスを用いた老化細胞除去による慢性腎臓病の進行抑制効果の研究
④ キメラ技術を用いた臓器再生における種間バリア研究
⑤ 動物胎仔および胎仔腎臓への細胞移植システムの自動化・機械化の開発
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主な業績　
  1. Matsumoto N, Yamanaka S, Morimoto K, et al., Evaluation of the ability of human induced nephron progenitor cells to form chimeric renal organoids with mouse embryonic renal progenitor cells. BBRC. 2023. (in press) (Corresponding author)
  2. Matsui K, Kinoshita Y, Inage Y, et al., Cryopreservation of Fetal Porcine Kidneys for Xenogeneic Regenerative Medicine. J Clin Med. 2023 Mar 15;12(6):2293.
  3. Takamura T, Nagashima H, Matsunari H,et al., Development of a Cryopreservation Technique for Xenogeneic Kidney Grafts: Evaluation Using a Mouse Model. J Clin Med. 2022 Dec 6;11(23):7237.
  4. Saito Y, Yamanaka S, Matsumoto N, et al., Generation of functional chimeric kidney containing exogenous progenitor-derived stroma and nephron via a conditional empty niche. Cell Rep. 2022 Jun 14;39(11):110933. (*Co-first author)
  5. Saito Y, Matsumoto N, Yamanaka S, et al., Beneficial Impact of Interspecies Chimeric Renal Organoids Against a Xenogeneic Immune Response. Front Immunol. 2022 Feb 15;13:848433.
  6. Yamanaka S. Generation of chimeric kidneys using progenitor cell replacement: Oshima Award Address 2021. Clin Exp Nephrol. 2022 Jun;26(6):491-500. (Corresponding author)
  7. Matsumoto N, Matsui K, Saitou Y, et al., Techniques of fragile renal organoids transplantation in mice. Acta Cir Bras. 2021 Dec 17;36(11):e361102.
  8. Takamura T, Sasaki H, Hirayama H, et al., Techniques of orthotopic renal transplantation. II. Size-matched porcine grafts in monkey recipients. Acta Cir Bras. 2021 Jun 18;36(5):e360503.
  9. Yamanaka S, Matsui K, Fujimoto T, et al., In vivo regeneration of neo-nephrons in rodents by renal progenitor cell transplantation. STAR Protoc. 2021 Feb 1;2(1):100314.
  10. Fujimoto T, Yamanaka S, Tajiri S, et al., Generation of Human Renal Vesicles in Mouse Organ Niche Using Nephron Progenitor Cell Replacement System. Cell Rep. 2020 Sep 15;32(11):108130. (Corresponding author)
  11. Yokoo T, Yamanaka S, Kobayashi E. Xeno-regenerative medicine: A novel concept for donor kidney fabrication. Xenotransplantation. 2020 Sep;27(5):e12622.
  12. Saito Y, Yamanaka S, Fujimoto T, et al., Mesangial cell regeneration from exogenous stromal progenitor by utilizing embryonic kidney. Biochem Biophys Res Commun. 2019 Dec 10;520(3):627-633.
  13. Yamanaka S, Saito Y, Fujimoto T, et al., Kidney Regeneration in Later-Stage Mouse Embryos via Transplanted Renal Progenitor Cells. J Am Soc Nephrol. 2019 Dec;30(12):2293-2305.
  14. Fujimoto T, Yamanaka S, Tajiri S, et al., In vivo regeneration of interspecies chimeric kidneys using a nephron progenitor cell replacement system. Sci Rep. 2019 May 6;9(1):6965.
  15. Tajiri S, Yamanaka S, Fujimoto T, et al., Regenerative potential of induced pluripotent stem cells derived from patients undergoing haemodialysis in kidney regeneration. Sci Rep. 2018 Oct 8;8(1):14919.
  16. Fukunaga S, Yamanaka S, Fujimoto T,et al., Optimal route of diphtheria toxin administration to eliminate native nephron progenitor cells in vivo for kidney regeneration. Biochem Biophys Res Commun. 2018 Feb 19;496(4):1176-1182.
  17. Yamanaka S, Tajiri S, Fujimoto T, et al., Generation of interspecies limited chimeric nephrons using a conditional nephron progenitor cell replacement system. Nat Commun. 2017 Nov 23;8(1):1719.
  18. Fujimoto E, Yamanaka S, Kurihara S, et al., Embryonic kidney function in a chronic renal failure model in rodents. Clin Exp Nephrol. 2017 Aug;21(4):579-588.
  19. Yokote S, Matsunari H, Iwai S, Yamanaka S, et al., Urine excretion strategy for stem cell- generated embryonic kidneys. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Oct 20;112(42):12980-5.
  20. Yamanaka S, Yokoo T. Current Bioengineering Methods for Whole Kidney Regeneration. Stem Cells Int. 2015;2015:724047.
  21. Yamanaka S, Yokote S, Yamada A, et al., Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells in long-term dialysis patients display downregulation of PCAF expression and poor angiogenesis activation. PLoS One. 2014 Jul 15;9(7):e102311. Erratum in: PLoS One. 2016;11(6):e0157282.
  22. Yamada A, Yokoo T, Yokote S, et al., Comparison of multipotency and molecular profile of MSCs between CKD and healthy rats. Hum Cell. 2014 Apr;27(2):59-67.
  23. Yokote S, Yamanaka S, Yokoo T. De novo kidney regeneration with stem cells. J Biomed Biotechnol. 2012;2012:453519.
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著書
  1. Yamanaka S, Yokoo T, Generation of Whole Kidney and Other Possible Strategies to Renal Replacement Therapy in the Future, Innovations in Nephrology pp 201?216, First Online: 29 October 2022, Springer Nature　(Corresponding author)
  2. 分担著書、山中修一郎、横尾隆, 腎臓のオルガノイドと再生, 腎疾患・透析最新の治療2023-2025, 南江堂
  3. 分担著書、松井賢治、山中修一郎、横尾隆, "ビジュアルアブストラクトで読みとく 腎臓論文ベストセレクション"　腎臓研究におけるsingle cell RNA sequencing, Page290, 2022, 中外医学社,
  4. 山中 修一郎, 他, 監修 仲元秀友, これまでがワカル。これからがワカル。透析療法最前線, 各論8: これからの透析医療「56. 再生医療最前線」東京医学社, Page363-368, 2018
主な競争的研究費
  • JST創発的研究支援事業（代表）
    ｢種間バリア克服に向けた高性能キメラオルガノイドの開発｣

  • 日本医療研究開発機構AMED 再生医療実現拠点ネットワークプログラム
    再生・細胞医療・遺伝子治療研究開発課題(非臨床 PoC 取得研究課題) (分担)
    ｢段階的胎生臓器補完による網羅的慢性腎不全の抜本的治療法の開発｣

  • 日本医療研究開発機構AMED 再生医療実現拠点ネットワークプログラム
    再生・細胞医療・遺伝子治療研究開発課題(基礎応用研究課題）個別型（若手B）) (代表)
    ｢臓器再生早期実現に向けた誘導前駆細胞による胎仔キメラ作製とマルチキメラ腎臓の開発｣

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その他
プレスリリース
ブタ腎臓移植は、胎仔腎臓の方が拒絶反応が弱い 〜サルを用いた世界初の証明〜
https://research-er.jp/articles/view/108205
プレスリリース
ネフロン前駆細胞から腎臓再生成功―臨床応用に向けた最終段階へ―
https://research-er.jp/articles/view/65298
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特許申請
  • ・｢腎臓の製造方法｣、PCT/JP2017/021310、WO2018003451A1
  • ・｢非ヒト動物、及びその利用｣、PCT/JP2023/13642
  • ・｢非ヒト動物、及びキット｣、特願2023-051810
  • ・｢ヒト動物、及びその利用｣、特願2022-063993
  • ・｢試料吐出システム、試料吐出装置、試料吐出方法、及び人工組織の製造方法｣、特願2022-063601
  • ・｢移植材料｣、特願2020-009388
  • ・｢腎臓の製造方法｣、特願2020-209594
  • ・｢腎臓の製造方法｣、特願2020-209590
  • ・｢腎臓の製造方法｣、特願2018-525007
  • ・｢腎臓の製造方法｣、特願2018-525008
  • ・｢腎臓の製造方法｣、特願2018-525009
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